细胞脂肪变性常用染色法有哪些?
苏丹Ⅲ。脂肪，意思是生物体内贮藏能量的物质，是生物的重要组成部分，变形可以用苏丹Ⅲ染色加以证明，苏丹Ⅲ染色液主要用于显示组织器官的脂肪变性和类脂质的异常沉着。
(4)银染色：用于染网状纤维，了解网纤维的多少，分布如何，区别未分化的癌和肉瘤。(5)苏丹Ⅲ、苏丹Ⅳ和苏丹黑染色：均为脂肪染色，证明组织中是否有脂肪，特别用于脂肪肉瘤或脂肪变性，脂质代谢障碍或含有脂质肿瘤的辅助诊断。
脂肪可以用：苏丹红Ⅲ或苏丹红Ⅳ染色。苏丹红Ⅲ+脂肪→橙色。苏丹红Ⅳ+脂肪→红色。脂肪由C、H、O三种元素组成。 脂肪是由甘油和脂肪酸组成的三酰甘油酯，其中甘油的分子比较简单，而脂肪酸的种类和长短却不相同。
在病理检验中，脂类染色法最常用以证明脂肪变性，脂肪栓子以及肿瘤的鉴别。脂类染色使用最广泛的染料是苏丹染料，最常用的有苏丹Ⅲ，苏丹Ⅳ，苏丹黑及油红O等。脂肪被染色，实际上是苏丹染料被脂肪溶解吸附而呈现染料的颜色。
油红O脂肪染色法的材料和方法
需要的其他试剂：异丙醇、乙醇、丙酮、苏木素（hematoxylin）染色步骤：1．将冰冻切片(厚度为4-8um)常温干燥15-20min.2．100%异丙醇孵育5分钟（避免把水带入油红O）。
染色步骤：(1)冻切片 (2)蒸馏水充分洗涤。(3)油红稀释液染10-15分钟，避光、密封。油红稀释液的配制：(4)取油红饱和液6毫升，加蒸馏水4毫升，静置5-10分钟后过滤后使用。(5)60%乙醇镜下分化至间质清晰。
苏丹Ⅲ（Ⅳ）染色方法：（1） 冰冻切片用70％乙醇漂洗，不超过30s。（2） 切片入苏丹Ⅲ（Ⅳ）染液中3~15min或延长至1h。（3）新50％~70％乙醇分化，直至洗去切片上的浮色为止，蒸馏水洗。
油红O为脂溶性染料，在脂肪内能高度溶解，可特异性的使组织内甘油三酯等中性脂肪着色。传统配制油红O染液 ，所用的丙酮和异丙醇极易挥发，致使染液产生沉淀，染色时易在组织片上留下红色的结晶，而影响结果的判断。
%中性甲醛的配制 材料：中性甲醛(多聚甲醛)密封瓶 称取1g中性甲醛粉末，加入10ml的三蒸水中，密封，在60度水浴中过夜才能溶解。配好的溶液1个星期内有效，最好4度保存。
油红O脂肪染色法是指在日常病理诊断和科研工作中为了显示组织内的脂肪常采用油红O进行染色的方法，油红O为脂溶性染料，油红染色与油红o染色一样。
油红0染色可以用多聚甲醛浸泡一年的组织
能。标本放置了相当长的时间，拿出来做免疫组化，效果很不理想，找不到实验操作的问题，分析可能就是标本放置时间过久，还是用4%多聚甲醛固定的。
）取下组织，立即用新制备的4％甲醛固定，室温过夜。用多聚甲醛(EM 级）制备4％的甲醛溶液，在100 ml 水中加8g 多聚甲醛，在通风橱中加热至50 ~ 60℃．加几滴1 moL/L NaOH 使固体全部溶解。
甲醛、多聚甲醛这些固定液的固定时间是不能太久的，一般24-48小时足够了。
多聚甲醛之所以能够起到很好的固定效果，和它的制作工艺、物理性质和化学性质是分不开的。
%中性甲醛的配制 材料：中性甲醛(多聚甲醛)密封瓶 称取1g中性甲醛粉末，加入10ml的三蒸水中，密封，在60度水浴中过夜才能溶解。配好的溶液1个星期内有效，最好4度保存。
多聚甲醛流水冲洗和浸泡。后续需使用适当的洗涤液充分洗涤以去除残留的多聚甲醛。对于组织块样品，浸泡入4%多聚甲醛固定液中，室温或4℃浸泡固定2到24小时。
油红o染色用什么荧光拍照
1、不能。油红不能在共聚焦下拍出荧光，油红是一种常用的食用色素，不会发出荧光。荧光是指物质在受到特定波长的光照射时，会发出比照射光更长波长的光。油红本身不具有荧光性质，因此在共聚焦显微镜下，不会发出荧光。
2、待Hoechst 染色完成后，用D-Hanks 冲洗除净残余的Hoechst 染料接下来，再加入用PI 染液，使其终质量浓度为10 μg/mL，4 ℃下避光反应15 min，染色完成也用D-Hanks冲净残余染液最后，将染好的细胞置于倒置荧光显微镜下观察、拍照。
3、天。根据查询960化工网得知，斑马鱼油红o染色可以最多可以存放四天拍照，不能长期保存。斑马鱼油红o染色制作完成后需要立即放入恒冷箱中的固定液固定1分钟后即可染色。
4、最常用的有苏丹ⅲ，苏丹ⅳ，苏丹黑及油红o等。脂肪被染色，实际上是苏丹染料被脂肪溶解吸附而呈现染料的颜色。脂类染色，用冰冻或石蜡切片，以水溶性封固剂封固，如甘油明胶和阿拉伯糖胶等。
5、毫升培养瓶。如果培养载体为塑料制品，hoechst33342染核的话，塑料板自发荧光也为蓝色，必须考虑。.染色对象 间充质细胞脂肪诱导后不同时间段。注意事项：脂肪油红染色，有的是动物/人体脂肪组织切片，或细胞爬片。
6、油红O染色脂滴发黑的原因可能是由于固定剂使用不当或者染色时间过长，导致脂滴被氧化或者沉淀。这可能会改变脂滴的化学性质，使其呈现不同的颜色。
油红o为什么染不进细胞
1、操作不当：如果在染色过程中操作不当，如染液温度不当、染色时间不准确等，也可能导致染色失败。 细胞问题：如果细胞本身存在异常，如细胞死亡、细胞膜受损等，也可能导致染色失败。
2、油红o染料析出是由于温度导致的。油红O溶液是饱和溶液，室温或4摄氏度保存时，会有少量沉淀析出或瓶壁有少量不溶物粘附，但是不影响使用。
3、是没混匀。油红o染色是染料没分散均匀或染色的时间不够长导致的黑色沉渣，如果在染色前未充分搅拌或染色的时间不够，染料可能无法完全分散均匀，导致染色不充分。
4、油红O是一种染料，常用作脂肪染色剂，其本身可能有毒性。然而，具体的毒性程度或者对人体的伤害程度并**没有明确的研究结果**。建议您在使用此类化学试剂时注意保护个人安全，遵循相关安全操作规程。
油红-o染色的技术和步骤
需要的其他试剂：异丙醇、乙醇、丙酮、苏木素（hematoxylin）染色步骤：1．将冰冻切片(厚度为4-8um)常温干燥15-20min.2．100%异丙醇孵育5分钟（避免把水带入油红O）。
油红O是一种染料，常用作脂肪染色剂，其本身可能有毒性。然而，具体的毒性程度或者对人体的伤害程度并**没有明确的研究结果**。建议您在使用此类化学试剂时注意保护个人安全，遵循相关安全操作规程。
标本 人或动物的肝组织等，甲醛—钙液固定，冰冻切片，厚10μm。 改良的油红O染色液 油红O 0. 5g， 50%乙醇100ml。将油红O溶于乙醇内，且不断搅拌至完全溶解即可。配制好的染液置磨口瓶内保存备用。
油红O染色步骤：单核细胞源性巨噬细胞用OX-LDL诱导24h后， 倒置显微镜下观察， 巨噬细胞体积进一步增大，细胞膜突触形成明显，胞浆增加，疏松化，可见大量细胞器及吞噬的脂质小滴 。
